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昆明山海棠对人白血病细胞HPRT位点的影响

昆明山海棠对白血病细胞HPRT位点的影响

  第三军医大学学报1999年第21卷第2期

刘胜学 曹佳 安辉 杨明杰 敖琳 杨录军

  提 要 目的:研究昆明山海棠对白血病细胞HL-60 HPRT位点的影响。方法:用THH水溶液对HL-60细胞进行浓度梯度染毒,不同时间点进行单细胞微孔接种,计数阳性克隆,测定接种存活率、克隆效率和突变频率。结果:THH染毒细胞的突变频率,在处理剂量3.35~20.10 mg/ml范围内,具有明显的剂量-反应关系。但随着THH的浓度增高至33.50 mg/ml组,由于细胞存活率太低,细胞数不够最后接种要求,不能继续进行。这一现象可能与THH的细胞毒性有关。结论:THH对HL-60细胞具有肯定的致突变性,但只是在一定的剂量范围内遵循剂量反应规律。

  关键词:昆明山海棠 HPRT位点 致突变作用 HL-60细胞

  昆明山海棠[Tripterygium Hypoglaucum(Levl) Hutch,THH]是一种传统中药,为卫茅科雷公藤属植物,主要化学成分包括生物碱、贴类及色素剂。THH在中医临床上,常用于治疗风湿性关节炎、红斑狼疮等自身免疫性疾病,由于发现THH具有可逆性抗生育及抗肿瘤效应而引起们的关注。有资料表明THH有明显的细胞分裂抑制效应、非整倍体毒性和可能的染色体损伤作用,但关于THH在基因水平上的影响作用还很少报道[1~4]。因此,本研究采用HL-60细胞作为实验对象,观察THH对HPRT位点的影响作用,为探讨THH的遗传毒性以及抗肿瘤作用的机制提供一定的材料与信息。

  1 材料与方法

  1.1 实验用细胞株

  HL-60细胞,属急性早幼粒白血病细胞株。细胞形态呈淋巴母细胞样,核型46(43~48),倍增时间12~16 h[5]。由本校营养卫生教研室张乾勇博士惠赠。细胞呈悬浮生长,接种(1×104细胞)于培养瓶中,每2~3 d换液一次。实验前用1% HAT培养基(内含次黄嘌呤、氨基喋呤和胸腺嘧啶核苷)除去自发突变。

  1.2 THH的制法

  20 g THH根茎打碎成小颗粒,加入400 ml双蒸水,浸泡过夜,煮沸3次,每次2~3min,取上层液体浓缩成30 ml,依次经过滤纸、0.45 μm、0.22 μm的滤膜过滤,4℃保存备用。

  1.3 染毒与细胞毒性测定

  将指数生长期的细胞弃去培养液,然后加入含不同浓度THH的不完全培养液(1.67、5、10、20、33.33 μg生药/ml),染毒6h。以含一定体积双蒸水的有血清培养基作为阴性对照,以50 μg/ml ENU作为阳性对照(染毒4h),停止染毒后用D-Hanks液冲洗两次,更换正常的完全培养液。计数细胞,用完全培养液稀释后,接种于无菌96孔培养板中,每孔约1个细胞(200 μl),每板79~89孔,置于37℃,5%CO2培养箱中培养,7 d后计数阳性孔数,求细胞接种存活率(Plating efficiency,PE)。

  1.4 表现型表达与突变频率的测定

  取表达结束后(8 d)的HL-60细胞,计数稀释后,接种于无菌96孔板中,每孔1个细胞,培养7d后,计数阳性克隆孔,求出克隆形成率(Cloning efficiency,CE)。

  同时以1×104个细胞/孔接种于96孔板中,每孔200 μl筛选培养液,含6-硫代鸟嘌呤1 μg/ml,37℃、5%CO2培养8 d,计数阳性孔数,求突变频率(Mutation frequency,MF)。

  2 结果

  THH对白血病细胞HL-60的毒性作用见图1。随着染毒剂量的加大,细胞存活率明显下降,数据经计算机曲线拟合,符合数学模型Y=96.3 e-0.03X,可决系数R2=0.972,残差平方和SSR=239.543,P<<0.01,说明细胞存活率与染毒剂量有非常显著的线性相关。

图1 细胞接种存活率与THH染毒剂量之间的关系

  fig 1 The relationship between platingefficiency and THH dose

  THH诱发白血病HL-60细胞HPRT位点突变频率见图2。剂量在0~20.1 mg/ml范围时,突变频率随着染毒剂量的加大而明显增加,数据采用计算机曲线拟合,符合以下数学模型Y=-3.34+0.76X,可决系数R2=0.891,残差平方和SSR=287.88,P<0.01,说明突变频率与染毒剂量有非常显著的线性相关。但随着THH的浓度增高至33.33 mg/ml时,由于细胞存活率太低,达不到最后接种要求,不能继续进行。因此,THH的遗传毒性及致突变性并不是单纯遵循剂量越大,效应越大这一简单的剂量反应关系,而只是在一定的剂量范围内遵循这一规律。

图2 THH染毒剂量分别与细胞克隆效率、突变频率之间的关系

  fig 2 The relationship among cloning efficiency,mutation frequency and THH dose

  3 讨论

  和啮齿类动物细胞的次黄嘌呤鸟嘌呤磷酸核糖基转移酶(Hypoxanthine-guanine phosphoribosyl-transferase, HPRT)位点的基因产物是HPRT,该酶参与细胞内嘌呤核苷酸生物合成的补救途径,它可以一些嘌呤类似物如6-硫代鸟嘌呤、6-巯基嘌呤及8-氮鸟嘌呤为底物,生成核苷-5-单磷酸,后者掺入到DNA中将引起细胞死亡。因此,在含6-硫代鸟嘌呤的培养基中,HPRT位点突变的细胞可以生长,而未产生突变的细胞则不能存活[6]。本实验采用HL-60细胞HPRT位点正向突变试验检测到THH的细胞毒性和致突变性,发现诱变细胞的克隆效率与突变频率呈反向关系,并得出了THH的剂量与HPRT基因突变频率的量效关系的数学模式,这一方面有利于对环境致突变剂生物危害的定量评价,另一方面使不同类型环境致突变剂生物危害效应的定量比较成为可能。

  对THH遗传毒性的研究国内外只有少量报道。汪旭等[2]经Ames试验、外周血淋巴细胞姐妹染色单体互换以及小鼠骨髓细胞染色体结构畸变分析,发现THH的水提取物及乙醇提取物均有低度基因毒性效应,在对细菌无明显杀伤作用的剂量下都能诱发细菌靶基因发生碱基置换与移码突变。THH处理外周血淋巴细胞后,诱发姐妹染色单体互换频率显著升高,同样表明基因毒性的存在。在对THH诱发果蝇生殖细胞非整倍体的研究中发现,THH可在果蝇生殖细胞形成中导致染色体的丢失或不分离[1]。我室应用荧光原位杂交技术和抗着丝粒抗体间接免疫荧光染色技术对THH诱导NIH3T3细胞产生的微核进行了检测,结果表明,微核中有62.1%~68.4%均带有标记上的着丝粒,显示其来源于染色体异常分离后丢失的整条染色体,也表明THH有较强的非整倍体毒性[7]。在进一步研究THH是否对染色体结构造成损伤中发现,THH在小鼠骨髓细胞染色体畸变分析中未表现出明显的染色体断裂效应,另在对NIH3T3细胞的研究中也获得类似结果,仅高剂量组有染色体畸变,并提示结构畸变集中在“带着丝粒的断片”。THH较确切的非整倍体毒性和可能存在的染色体损伤作用,暗示THH能对着丝粒蛋白的结构和功能造成一定损害[7]

  有报道指出,THH成分中的雷公藤素甲和乙对白血病模型L1210、P388、L615小鼠有明显的抗肿瘤活性,而且长期存活小鼠经数次攻击仍未导致白血病。雷公藤酮对体外培养的鼻咽癌细胞ED50为(10-3~10-4)μg/ml[4]。Kupchan[8]认为雷公藤素甲的作用原理是9、11位环氧开环,使药物对生物大分子发挥选择性烷化剂作用。本实验采用白血病HL-60细胞获得的结果是否与THH抗肿瘤性有关还不清楚。我们正在进一步采用多重PCR技术,对突变克隆DNA扩增其HPRT位点的9个外显子,以期明确突变发生的位置、性质,为进一步开发利用传统中药THH提供有益的线索。

  作者简介:刘胜学,男,29岁,助教,硕士作者单位:第三军医大学预防医学系分子毒理学教研室 重庆,400038

  参考文献

  1 汪 旭,合正基,刘素清.昆明山海棠诱发果蝇生殖细胞非整倍体的研究.遗传,1995,17(5):34

  2 汪 旭,周汝敏,严 勇,等.昆明山海棠遗传毒性评价.遗传,1993,15(6):13

  3 王士民,王 薏,张珠涛,等.昆明山海棠对雄性大鼠的抗生育作用及其可逆性研究.中国药学杂志,1989,24(11):652

  4 贾 力.雷公藤属植物的化学、药理和临床应用.药学通报,1985,20(2):101

  5 Collins S T, Gallo R C, Gallagher R E. Continuous growth and differentiation of human myeloid leukemic cells in suspension culture. Nature,1977,270(4837):347

  6 刘毓谷.卫生毒理学基础.第2版.北京:民卫生出版社,1994.107~108

  7 曹 佳,胡 斌,程天民,等.昆明山海棠在微核实验中非整倍体毒性的研究.遗传,1997,19(1):1

  8 Kupchan S M. Therapy of renal diseases and related disorder. Cancer Treat Rep,1976,60(8):1115


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