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肺癌标志物芳烃羟化酶的临床应用意义探讨

肺癌标志物芳烃羟化酶的临床应用意义探讨

  中华结核和呼吸杂志2000年第23卷第3期

陈良安 刘又宁

   摘要 目的:寻找较为理想的肺癌标志物,为肺癌的早期诊断提供帮助。方法:采用荧光分光光度仪对51名正常、30例良性肺病患者及93例不同病理分型、不同分期的肺癌患者(腺癌30例,鳞癌30例,小细胞癌33例;Ⅰ、Ⅱ期患者28例,Ⅲ期患者35例,Ⅳ期患者30例)外周血淋巴细胞芳烃羟化酶(AHH)活性及变化进行了观察并与癌胚抗原(CEA)进行了对比。结果:肺癌患者外周血淋巴细胞AHH活性为(4.9±2.1) pmol·min-1.10-6细胞,其中鳞癌患者、正常和良性肺病患者分别为(7.3±1.9)、(1.1±0.7)和(1.2±0.6) pmol·min-1.10-6细胞,提示肺癌患者外周血淋巴细胞AHH活性显著高于正常及良性肺病患者,尤以鳞癌为著。此外,Ⅰ、Ⅱ期患者外周血淋巴细胞AHH活性为(3.7±1.4) pmol·min-1.10-6细胞,Ⅲ期患者为(5.1±2.1) pmol·min-1.10-6细胞,Ⅳ期患者为(7.1±1.8) pmol·min-1.10-6细胞,而且,病情恶化时AHH活性升高,病情改善时AHH活性降低。诊断评价提示:AHH灵敏度和特异性均在80%以上,对鳞癌的灵敏度达90%以上。AHH对肺癌相对危险度为2.83。结论:AHH是一个较为理想的肺癌标志物,尤其对肺鳞癌有较好的灵敏度和特异性,可用于肺癌的临床诊断、病情监测和预后估计。

   关键词:芳烃羟化酶 肺肿瘤

   近年来,肿瘤标志物的研究进展迅速。其中许多标志物已应用于临床,为某些肿瘤的早期诊断提供了有效的手段。但目前还未能发现较满意的肺癌标志物,尤其是肺鳞癌的特异性和灵敏度较好的标志物尚为空白。为此,我们在国内首次建立了外周血淋巴细胞芳烃羟化酶(aryl hydrocarbon hydroxylase, AHH)的检测方法,并对其在肺癌的临床诊断应用进行探讨。

  材料与方法

  一、实验试剂与仪器

  植物血凝素M、 美洲商陆和苯并芘由美国Sigma公司提供, 还原型辅酶Ⅰ、还原型辅酶Ⅱ为德国Gmbh公司生产,癌胚抗原(CEA)酶免疫试剂由北京生物制品所生产。铂金荧光分光光度仪由美国Abbore公司生产。

  二、受试对象

  健康对照51,男性31,女性20,平均年龄(40±15)岁。良性肺病组(结节病3例、肺结核10例、结核性胸膜炎17例)共30例,男性18例、女性12例,平均年龄(43±10)岁。肺癌组共93例(均由病理证实),男性50例,女性43例,平均年龄(42±12)岁。其中Ⅰ、Ⅱ期患者28例,Ⅲ期患者35例,Ⅳ期患者30例。腺癌患者30例,小细胞癌患者33例,鳞癌患者30例。

  三、AHH活性的检测

  受试者禁用一切药物及可能影响AHH的食物(如咖啡等)3 d,静卧8 h,凌晨7时空腹在无菌条件下,抽取前臂静脉血约10 ml,用淋巴细胞分离液分离淋巴细胞。 置淋巴细胞于淋巴细胞培养液,于二氧化碳孵箱中孵育72 h。收获淋巴细胞,加入1 ml Tris-HCl缓冲液、80 mmol的苯并芘,于37℃水浴1 h后,用正己烷-丙酮混合物中止反应,充分振荡混合,离心10 min,取上相3 ml于另一试管。加入1 mol/L NaOH 2.5 ml,充分振荡混合后,离心10 min,取碱相用荧光分光光度仪测定荧光强度,并通过标准曲线推算出AHH活性。

  四、CEA的测定

  采血的同时取2 ml血于不抗凝试管中,取血清0.5 ml。CEA的测定方法为单克隆抗体法。

  五、统计处理

  将上述实验数据输入电子计算机进行统计学处理,所用软件包为美国SAS软件,分别采用F检验、Duneett t检验、t检验、卡方检验,P<0.05时判断为差异有显著性,P<0.01时则为差异有极显著性。

  结果

  正常组、良性肺病组和肺癌组外周血淋巴细胞AHH活性及血清CEA含量的差异如表1。经F检验和Duneett t检验证实肺癌组AHH和CEA明显高于其它组,其中AHH较正常组和良性病组分别升高335%和309%,正常与良性肺病二组间无差异,肺癌组AHH明显高于其它组。

表1 三组受试者外周血淋巴细胞AHH活性及

血清CEA含量的比较(x±s)

组别 例数 AHH(pmolmin-1

  10-6细胞)

CEA(ng/ml)
正常 51

1.1±0.7

2.4±0.7

良性肺病组 30 1.2±0.6 2.5±0.6
肺癌组 93 4.9±2.1 6.5±3.9*

注: 肺癌组与其它组比较*P<0.05,P<0.01   不同分期肺癌患者外周血淋巴细胞AHH活性及血清CEA含量的差异如表2所示。AHH在Ⅰ、Ⅱ期已显著高于正常组和良性肺病组,且随分期而升高。这一趋势在CEA不明显。

表2 各期肺癌患者外周血AHH和CEA含量的比较(x±s)

组别 例数 AHH(pmolmin-1

  10-6细胞)

CEA(ng/ml)
正常 51

1.1±0.7

2.4±0.7

良性肺病组 30 1.2±0.6 2.5±0.6
肺癌组
 Ⅰ、Ⅱ 期 28 3.7±1.4△☆ 3.9±2.4▲★
 Ⅲ 期 35 5.1±2.1△☆ 5.0±4.0▲★
 Ⅳ 期 30 7.1±1.8△☆ 5.3±4.6▲★

注:与正常组比较P<0.05,P<0.01;与良性肺病组比较P<0.05,P<0.01   各组织类型肺癌外周血淋巴细胞AHH活性及血清CEA含量的差异如表3。AHH在鳞癌组升高最为明显,较正常组和良性病组分别升高550%和511%,较小细胞癌组升高57%,较腺癌组升高76%,而CEA在腺癌组升高最为明显。

表3 各组织类型肺癌外周血淋巴细胞AHH及血清CEA含量的比较(x±s)

组别 例数 AHH(pmol·min-1·

  10-6细胞)

CEA(ng/ml)
正常 51

1.1±0.7

2.4±0.7

良性肺病组 30 1.2±0.6 2.5±0.6
肺癌组
 腺 癌 组 30 4.1±1.1▲★ 13.9±5.7△☆
 小细胞癌组 33 4.6±1.2▲★ 5.6±4.5▲★
 鳞癌组 30 7.3±1.9△☆ 3.1±2.9▲★

注: 与正常组比较P<0.05,P<0.01;与良性肺病组比较P<0.05,P<0.01  肺癌患者病情变化时,外周血淋巴细胞AHH活性亦改变(表4)。病情改善时AHH明显下降(P<0.01),而CEA则不明显。病情恶化时,AHH和CEA均有不同程度升高(P<0.05)。

  我们以1.79 pmol·min-1·10-6细胞为AHH正常值,3.14 ng/ml为CEA正常值,并以此值进行诊断评价指标的推算:(1)AHH和CEA的诊断评价结果(表5)表明AHH在灵敏度、特异度、诊断符合率等诊断评价指标均明显优于CEA,如果两者合用,效果更好。(2)AHH和CEA在不同组织类型肺癌中的诊断评价结果(表6)表明AHH在鳞癌的灵敏度最高(P<0.05),而CEA在腺癌的灵敏度最高(P<0.05);AHH和CEA的特异度和假阳性率在各组间差异无显著性(P>0.05)。

  分析表明AHH升高发生肺癌的相对危险度(RR)为2.83,P<0.05,而CEA仅为0.22,且差异无显著性(P>0.05)。

表4 肺癌患者病情变化时外周血淋巴细胞AHH活性及血清CEA含量的变化(x±s)

指标 病情改善 病情恶化
例数 就诊时 改善后 例数 就诊时 恶化后
AHH(pmol·min-1·10-6细胞) 12

4.1±2.7

2.0±0.6**

15

2.8±0.6

4.0±1.4*

CEA(ng/ml) 12 5.2±1.2 4.7±1.2 15 4.4±0.9 5.1±0.8*

   注: 病情改善指标为肺内病灶缩小1/3以上者,病情恶化的指标为肺内病灶增大或出现转移。就诊时与改善后或就诊时与恶化后比较,** P<0.01,*P<0.05

表5 AHH和CEA的诊断评价及比较

指标 灵敏度

  (%)

特异度

  (%)

假阳性率

  (%)

假阴性率

  (%)

阳性确诊率

  (%)

阴性确诊率

  (%)

误诊率

  (%)

漏诊率

  (%)

诊断符合率

  (%)

诊断指数
AHH

90

80

20

10

89

82

11

18

87

0.71

AHH+CEA 96 82 18 4 91 91 9 9 91 0.78
CEA 60 67 33 40 77 48 23 52 63 0.27

  注: AHH与各组比较,P<0.05,P<0.01

表6 AHH和CEA在不同组织类型肺癌的诊断评价及比较

组别 例数 灵敏度(%) 特异度(%) 假阳性率(%) 假阴性率(%)
AHH CEA AHH+CEA AHH CEA AHH+CEA AHH CEA AHH+CEA AHH CEA AHH+CEA
腺癌组 30 83 83 97 80 67 82 20 33 18 17 17 3
小细胞癌组 33 91 52 94 80 67 82 20 33 18 9 48 6
鳞癌组 30 97 47 97 80 67 82 20 33 18 3 53 3

   讨论

  一、AHH的生物学特性

  AHH是广泛存在于体各组织细胞内的一种单氧化酶。尤其在肝组织和肺组织含量较高,外周血淋巴细胞内亦有该酶的存在,其含量与肺组织含量有正相关关系[1]

  AHH的主要生理功能之一就是参与苯并芘等多环芳烃的代谢活化。目前已证实以苯并芘为代表的多环芳烃与肺癌的关系密切[2-5]:苯并芘等多环芳烃经AHH等酶的代谢活化后,产生数十种活化代谢产物。后者,与细胞的DNA、RNA、组蛋白等结合,导致细胞基因突变、癌变而发展为肺癌。因此,AHH活性越高,活化的致癌代谢产物的生成也就越多,肺癌的发生发展的可能性也就越大。从理论上表明AHH可作为一可靠的肺癌标志物。

  二、肺癌患者外周血淋巴细胞AHH活性的变化

  表1提示外周血淋巴细胞AHH活性在肺癌组显著高于正常组和良性肺病组,其中肺癌组AHH活性较正常组及良性肺病组分别升高335%和309%。而后二组之间差异无显著性。由于外周血淋巴细胞AHH活性与肺组织AHH活性有一定的正相关关系,我们推测肺癌患者肺组织AHH活性可能有不同程度的升高,如上所述AHH活性升高将促进肺癌的发生与发展。因此,临床上,在有一定病史的患者,AHH持续高水平则有助于肺癌的诊断。如果在已经明确的肺癌患者AHH居高不下,可能提示病变进展。此外, 表2表明在早期(Ⅰ、Ⅱ期)肺癌患者AHH活性已经显著高于正常及良性肺病者,可见AHH有助于肺癌的早期诊断。

  AHH活性在不同组织细胞类型的肺癌的升高程度是不一致的(表3)。其中鳞癌较正常和良性肺病组高5倍以上,较腺癌和小细胞癌也升高57%~76%左右。AHH在腺癌组和小细胞癌组与正常组和良性肺病组比较也有显著升高, 但不及鳞癌幅度大。提示AHH对鳞癌还具有一定的特异性。CEA则在腺癌升高幅度最为明显。因此,AHH对提高鳞癌的诊断有一定的意义。

  三、AHH对肺癌监测和预后估计的意义

  从表2可看出,随着病情进展,从Ⅰ、Ⅱ期到Ⅲ期、Ⅳ期,AHH活性呈进行性增高趋势,而CEA这一趋势不明显。表4也提示:病灶缩小时,AHH活性有显著性下降。病情加重时,AHH活性显著上升。这一变化幅度亦超过了CEA。可见AHH随病情变化而波动。Bartsch等[6]也报告了AHH是肺癌预后估计的良好指标。因此,我们认为AHH活性的变化,对肺癌病情的判断、监测和预后估计具有一定的临床意义。

  四、AHH的诊断评价

  从表5可以看出,AHH的各项诊断评价指标均较满意,且优于CEA。提示AHH是一较好的肺癌标志物。此外,AHH的各项诊断评价指标在不同细胞类型存在着差异(表6),对鳞癌最为敏感,小细胞肺癌次之,腺癌最差,而CEA正好相反。这些提示AHH对鳞癌具有相对特异性,有利于鳞癌的早期诊断,且与CEA、神经烯醇化酶等标志物有互补关系,联合使用效果更好。

  五、AHH对肺癌的相对危险度

  相对危险度分析表明AHH活性增高者发生肺癌为AHH正常者发生肺癌的2.86倍。因此,AHH不仅可作为肺癌标志物用于临床诊断和病情监测,也可用来发现高危群,推测危险性的大小。如果AHH持续增高,则是一个危险信号,尤其是有吸烟或有多环芳烃接触史者,更有必要密切观察,以期早期发现、及时治疗。许多国外学者亦持有同样观点[7,8]

  综上所述, AHH可作为较好的肺癌标志物,它不仅具有较高的灵敏度和特异度, 且对鳞癌有相对特异性, 可用于包括鳞癌在内的肺癌的早期诊断。同时, AHH与CEA、神经烯醇化酶存在互补关系, 联合使用, 意义更大。此外, AHH还可用于肺癌的病情监测、预后估计及高危群监测。

  作者单位:陈良安(100853 北京,解放军总医院呼吸科)

    刘又宁(100853 北京,解放军总医院呼吸科)

   参考文献

  1 Karki NT, Pokela R, Nuitinen L, et al. AHH in lymphocytes and lung tissue from lung cancer patients and controls. Int J Cancer, 1987, 39:565-567.

  2 Sato S, Tomita I . Response differences among mouse strains in DNA damage and skin carcinogenicity of 7,12-dimethylbenz[a]anthracene are due to inducible aryl hydrocarbon hydroxylase activity. Biol Pharm Bull, 1998, 21:90-92.

  3 Peluso M, Merlo F, Munnia, A et al. 32 P-postlabeling detection of aromatic adducts in the white blood cell DNA of nonsmoking police officers. Cancer Epidemiol Biomarkers Prev, 1998,7:3-11.

  4 Pelkonen O, Nebert DW. Metabolism of polycyclic aromatic hydrocarbons: etiologic role in carcinogenesis. Pharmacol Rev, 1982, 34:189-222.

  5 Conney AH. Induction of microsomal enzymes by chemical and carcinogenesis by PAH. Cancer Res,1982,42:4875.

  6 Bartsch H, Hietanen E, Giuntini C. Possible prognostic value of pulmonary AH-locus-linked enzymes in patients with tobacco-related lung cancer. Int J Cancer, 1990,46:185.

  7 Kiyohara C, Hirohata T. Environmental factor and aryl hydrocarbon hydroxylase activity in human lymphocytes. J Epidemiol, 1997,7:244-250.

  8 Scherer G, Richter E. Biomonitoring exposure to environmental tobacco smoke: a critical reappraisal. Hum Exp Toxicol, 1997, 16:449-459.


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