子宫内膜异位症不孕患者腹腔液IL-2活性及外周血T细胞亚群变化

　　第三军医大学学报1999年第21卷第10期

胡珊　史常旭

　　提　要　目的：探讨子宫内膜异位症导致不孕的免疫机制。方法：选择临床轻度子宫内膜异位症不孕患者，以多囊卵巢综合征及不明原因不孕的患者为对照。采取CTLL细胞株法检测腹腔液IL-2生物活性，以流式细胞分选技术检测外周血T淋巴细胞亚群的变化。结果：与对照组比较，轻度子宫内膜异位症不孕患者腹腔液IL-2活性显著增高，外周血CD⁺₄T细胞数目增加，而CD₈⁺T细胞变化不明显。结论：轻度子宫内膜异位症不孕患者腹腔免疫细胞处于高度活化状态、全身存在免疫异常。提示高水平IL-2与子宫内膜异位症导致不孕有关。

　　关键词：子宫内膜异位症　不孕症　白细胞介素-2　T淋巴细胞亚群

　　子宫内膜异位症(Endometriosis，EM)为生育期妇女最常见的疾病之一。不孕病人中25%～50%患有此病。但EM导致不孕的机制一直不十分清楚。近年的研究提出免疫机制可能参与EM不孕的病理生理过程。细胞因子作为细胞间相互作用的重要信使分子，引起广泛关注，认为细胞因子的异常很可能是造成不孕的直接原因。本实验以轻度EM不孕患者为研究对象，应用CTLL细胞株法检测了EM组及对照组腹腔液IL-2生物活性，应用流式细胞仪检测外周血T淋巴细胞亚群的改变。旨在了解EM不孕患者的免疫状态，探讨其在EM不孕中的意义。

　　1　材料和方法

　　1.1　主要试剂

　　淋巴细胞分离液(上海试剂二厂，比重1.077±0.002)、RPMI1640培养液(Gibco公司)、IL-2依赖性CTLL细胞株(ATCC公司)、抗CD4-FITC及抗CD8-FITC单抗(北京邦定公司)

　　1.2　观察对

　　于非行经期施行腹腔镜检查术。排除全身性疾患(包括感染)，术前3个月内未使用过任何激素及免疫制剂。

　　EM组：25例，年龄24～34岁，平均26.5岁，均为因不孕经腹腔镜检查诊断为轻度EM的患者，其中单纯性EM22例，合并慢性输卵管炎3例。

　　对照组：15例，年龄24～32岁，平均27.1岁。均为因不孕行腹腔镜检查的患者，12例诊断为多囊卵巢综合征，其中合并慢性输卵管炎4例;正常盆腔3例。

　　EM诊断依据：腹腔镜下依照Acosta^［1］分类标准，轻度EM表现为：子宫直肠窝、膀胱反折腹膜、子宫骶韧带或盆腔腹膜有分散的泡状、息肉样及片状，呈红色、暗红色或紫色等新、老的异位内膜灶，卵巢及输卵管周围无粘连，无巧克力囊肿。

　　多囊卵巢综合征诊断依据：腹腔镜下见双侧卵巢增大或正常大小，包膜增厚呈珍珠色，表面光滑，卵巢包膜下可见多个滤泡，无排卵痕迹，部分患者卵巢表面可见血管。

　　慢性输卵管炎诊断依据：腹腔镜下示输卵管迂曲，轻度或中度肿大，伞端可部分或完全闭锁，与周围组织粘连，或输卵管积水，或输卵管粗细不均。输卵管美蓝生理盐水通液检查提示输卵管通而不畅或不通。本研究中慢性输卵管炎患者腹腔镜下盆腔形态、解剖正常，仅输卵管通液检查示一侧输卵管不通或通而不畅，另一侧通畅者。

　　1.3　实验方法

　　1.3.1样本采集

　　1.3.1.1　收集腹腔液　　常规局麻下行电视腹腔镜检查术。顺序观察盆腔，经操作孔插入导管，抽吸子宫直肠窝腹腔液5 ml，立即置预冷含肝素的离心试管内。4°C 离心，3　000 r/min×5 min。将离心的上清分装，冻存于-20°C待测。

　　1.3.1.2　收集外周血及分离外周血淋巴细胞　　腹腔镜检查手术当日取患者肘静脉血5 ml，肝素抗凝，室温(18～28°C)保存(＜12 h)。常规方法分离外周血淋巴细胞。以无菌注射器抽取5ml淋巴细胞分离液，连接9号腰穿针，插入装有充分混匀血液的离心试管底部，渐渐注入分离液，立即置水平离心机，2　000 r/min×20 min。吸取血浆和分离液之间呈乳白色的淋巴细胞，至D-Hank's溶液内，离心洗涤2次，1　000 r/min×10 min，弃上清，管底淋巴细胞重悬于冻存剂中，-196°C液氮保存。

　　1.3.2　腹腔液IL-2活性的测定^［2］　　取生长良好的CTLL-2细胞，用RPMI1640洗涤2次，悬浮于含10%灭活小牛血清的完全RPMI1640培养液中，调整细胞浓度为1×10⁵/ml。在96孔培养板中，每孔加入细胞悬液100μl，再分别加入1∶2稀释的待测腹腔液上清及倍比稀释的标准品100μl/孔，平行3孔。设10% FCS RPMI1640 100 μl+CTLL-2细胞悬液100 μl(1×10⁵/ml)为阴性对照。培养物置37°C5% CO₂中培养24 h，每孔加入³H-TdR 1 μCi/ml，继续培养6 h。收集细胞于玻璃纤维滤纸上，晾干后用计数仪检测细胞的³H-TdR掺入值(即cpm值)。

　　1.3.3　T淋巴细胞亚群的检测　　采用流式细胞技术，快速复温冻存的淋巴细胞（每一样本2份），离心2　000 r/min×5 min，弃上清。再以冷PBS离心洗涤3次。将细胞用含5%FCS、0.01 mol/L PBS配成1×10⁶/ml悬液，按1∶4、1∶2分别加入抗CD4-FITC、抗CD8-FITC单抗，4°C避光反应30 min。离心后再以PBS洗涤3次，同时设置PBS为阴性对照。移入测试管中，流式细胞仪检测阳性细胞百分率。

　　1.4　统计学方法

　　采用SPLM软件，计算各指标的平均数与标准差，并作方差分析及相关性分析。方差不齐者，经变量代换后方差齐性，作方差分析。

　　2　结果

　　2.1　腹腔液IL-2活性

　　EM组腹腔液IL-2活性显著高于对照组(P＜0.05)，见表1。

表1　EM组及对照组腹腔液IL-2活性(min^-1,X±s)

　　tab 1　The IL-2 activity in peritoneal fluid (min^-1,X±s)

*:P＜0.01 vs control

　　2.2　外周血T淋巴细胞亚群分析

　　EM患者CD⁺₄T淋巴细胞百分率高于对照组，且具有统计学意义(P＜0.05)，见表2。而CD⁺₈T淋细胞百分率在EM组及对照组间未见明显差异。腹腔液IL-2活性显著增高的EM患者，其CD⁺₄T淋巴细胞亦呈较高水平，相关分析表明两指标呈显著正相关(r=0.595，P＜0.02)。

表2　EM组及对照组外周血T淋巴细胞亚群百分率(%,X±s)

　　tab 2　Percentage of T lymphocyte subpopulation in

　　peripheral blood(%,X±s)

*:P＜0.05 vs control

　　3　讨论

　　轻度EM为疾病早期，随着EM进展，出现腹腔免疫炎症、粘连及解剖结构的异常，不仅涉及免疫损伤，而且涉及机械性损伤，引起不孕。本实验选择轻度EM不孕患者为对象，其年龄在24～34岁，除不孕外，不伴其他系统疾患，也未见局部盆腔解剖结构异常及炎症体征，最大限度地避免了EM继发多因素对探讨不孕关系的影响。

　　IL-2由活化T细胞产生，同时又是T细胞增殖的必要条件。对机体IL-2水平的检测，是评估机体免疫活化状态的一个敏感指标^［3］。本实验采用敏感而可靠的生物活性法检测IL-2活性，显示轻度EM不孕患者腹腔液IL-2活性显著高于对照组，支持Hill的观点^［4］。已知T细胞产生IL-2，需要巨噬细胞(Mφ)分泌的IL-1及抗原两因素的共同作用。以往本科的研究已表明，轻度EM不孕妇女腹腔液Mφ存在质和量的变化，为高度活化的Mφ。结合本实验，提示轻度EM不孕患者的腹腔局部T、Mφ等免疫细胞处于高度活化状态，能够分泌高水平的IL-1、IL-2等细胞因子。大量实验表明处于活化的免疫细胞如Mφ可吞噬精子和产生前列腺素从而干扰生理活动。体外实验表明重组IL-1抑制精子穿过人卵细胞透明带^［5］，IL-2可降低精子对仓鼠卵的穿透力^［6］，从而导致不孕。本实验FACS分析表明，轻度EM不孕患者外周血CD⁺₄T细胞(T_H)数目增加，相关分析表明它与腹腔液IL-2活性水平显著正相关，提示外周血CD⁺₄T细胞数目增加代表活化T_H增加。文献^［7］表明IL-2及活化TH促进B细胞产生抗自身抗体，影响胚胎种植等，从而介导EM不孕。综上所述，EM不孕患者在疾病的早期即存在全身及腹腔局部免疫细胞活化和功能异常、细胞因子异常分泌等，它们可能通过多种途径在EM不孕中发挥重要作用。对EM导致不孕免疫机制的探讨将为治疗EM不孕开拓新的途径。

　　作者简介：胡姗，女，34岁，主治医师，硕士

　　作者单位：胡珊　史常旭(第三军医大学附属西南医院妇产科)重庆，400038

　　参考文献

　　1　Acosta a A, Buttrum V C, Franklin R R, et al. A proposed classification of pelvic endometriosis. Obstet Gynecol, 1973,42(1):19

　　2　Gillis S, Ferm M M, Smith K A, et al. T cell growth factor: Parameters of production and quantitative microassay for activity. J Immunol,1978,120(6):2027

　　3　Hill J A. Immunology and endometriosis. fertil Steril,1992，58(3):262

　　4　Hill J A, Anderson B J. Lymphocyte activity in the pre-sence of peritoneal fluid from fertile women and infertile women with and without endometriosis. Am J Obstet Gynecol,1989,16(4):861

　　5　Sueldo C E, Kelly E, Swanson J A, et al. effect of interleukin-1 on gamete interaction and mouse embryo development. J reprod Med, 1990，35(9):868

　　6　Hill J A, Cohen J, Anderson D J. The effects of lymphokines and monolines of human sperm fertilizing ability in the zonafree hasmter egg penetration test. Am J Obstet Gynecol, 1989,160(8):1154

　　7　Bruce A L, Arthur J C, Stephen J C, et al. Intergins as markers of uterine receptivity in women with primary unexplained infertility. Fertil Steril, 1995，63(3):535